孵化可影响肉鸡腿强度

骨特征、血清钙水平、早期生长率以及后期的弱腿都受我们通常使用的孵化方案的影响，根据悉尼大学兽医科学系的P.J. Groves 和W.I. Muir在2011年澳大利亚家禽科学研讨会的论文。

总结

肉仔鸡的弱腿一直被世界家禽业视为动物福利的重要关注之一，根据P.J. Groves 和W.I. Muir。最近的研究表明孵化条件可能对生长鸡只的骨骼完整性有影响。偶然发现的弱腿的实际发生使得研究人员以一些可能与弱腿有关的孵化条件变化为目标对弱腿进行研究。

在尝试在实验室复制同样的条件时（较高的高温（高0.5°C）以及较低的湿度（低3-4%的相对湿度）没有完全成功，研究人员能够证实在较高温度（高0.5°C）条件下孵出的肉仔鸡骨特征以及腿强度的重复效应。这些条件下降是在商业肉鸡蛋孵化的正常可接受范围内的。

前言

在现代肉仔鸡中各种形式的弱腿和瘸腿的病因是复杂的，包括与遗传、营养、感染、管理以及环境有关的因素。受感染的个体鸡只以及鸡群中相当比例的鸡只后果是严重的。Bradshaw等（2002）强调肉鸡弱腿的福利意义包括疼痛、受挫（不能行走）、采食饮水能量下降以及接下来脱水或挨饿的风险。在行走上有困难的鸡只受其他鸡只过多干扰的风险也更大（Buijs等，2010），其他鸡只会干扰它们睡觉/休息。不能行走的鸡只还倾向于皮肤容易刮伤，从而造成蜂窝组织炎并致死。

与弱腿有关的根本性的遗传原因还在研究之中（如Butterworth等2003年提供的证据）。主要肉鸡育种公司正在努力解决许多弱腿问题但是这需要多年的遗传筛选，其结果多年后才有可能在商业肉鸡中看见（Elfick, 2010; Hardiman, 2010）。

同时，肉鸡生产者通过关注营养、管理和环境风险因素可改善腿问题的流行性以及严重程度。一个作为对弱腿问题发生率有可能有帮助的新的领域是蛋孵化条件的变化。对精细调控孵化的研究可提供更多的管理机会以进一步抑制弱腿和瘸腿的发生率。

肉仔鸡中弱腿的简要介绍

瘸腿和弱腿被认为是严重的福利问题。在仔鸡中过多瘸腿情况是存在的。Bradshaw 等（2002）总结了这些如下：

• 感染所致（细菌性软骨坏死加上骨髓炎（所谓的股骨头坏死）、腱鞘炎以及传染性发育迟缓综合征）。
• 发育问题（弓形腿-外翻形腿畸形、胫骨软骨发育不良、佝偻病、chondrodystrophies（是一组增长和随后的软骨骨化障碍为特征的疾病）和脊椎前移）。
• 退化问题（骨软骨病、骺脱离、关节变性病、韧带断裂以及接触性皮炎）。

除了上面列出的明显的临床症状，在没有可见的畸形的鸡只上也能观察到运动困难，通常采用Kestin等（1992）描述的标准的“步态评分”标准来评估鸡只或鸡群的活动能力。

在英国使用步态评分作为基础的大范围研究表明27.6%的肉鸡具有较差的运动能力，3.3%的鸡只完全不能行走（Knowles等，2008）。许多研究没有再深入进行且根本的病理还没有识别出。Bradshaw 等（2002）表明细菌性软骨坏死、接触性皮炎（脚垫炎）以及弓形腿-外翻形腿畸形是最常见的情况。在大多数达到屠宰日龄的肉鸡群中，许多或者所有描述的情况都存在。

本文没有每种情况的具体描述，但是本文总结了更常见的情况发生的风险因素。

佝偻病是由于没有足够的钙、磷或维生素D3导致的骨矿化不足的一种疾病。现今的肉鸡营养是给肉鸡提供平衡的养分，在青年仔鸡上类佝偻病的发生较常见。临床佝偻病可继传染性发育迟缓综合征（ISS）后看见，这与由病毒诱导的消化有关的养分吸收低有关。我们对ISS免疫力的理解很少，虽然该病在鸡群上只是偶尔发生，但所涉及病毒预计在肉鸡环境中是广泛存在的。科学家想知道在许多鸡群中亚临床ISS在接下来大范围的骨骼问题中发生作用的可能性。

胫骨软骨发育不良（TD）是随着骨骼的生长正常的骨化遭到破坏。在胫跗节的干骨后端足量的血供应受到干扰导致到达生长板的养分不足且没有骨化的软骨软形成骨栓。骨头接下来很弱，可弯曲且在承重方面带来相当的痛苦。遗传、饲料中不当的电解质平衡以及霉菌毒素在TD形成中也具有一定作用。在肉鸡上此病很常见且通常与饲料中的钙：磷比例不平衡有关，加上从添加或不添加植酸酶的可利用原料很难预测实际可利用磷水平。

相当可能是早期退化疾病的存在，尤其是类佝偻病，可能诱使鸡只在后期生活中表现其他疾病。在实际中，可旋转胫骨腿正成为主要的腿畸形之一。这种疾病的病因未知但是早期佝偻病可能是诱导因素（Crespo & Shivaprasad，2008）。

许多弱腿疾病可能随着管理和环境因素而改变。但是实际和实验室研究有时在所观察的效果上是矛盾的。鸡群密度增加通常暗含着腿病问题发生率增加（Knowles等，2002; Bradshaw等，2002; Petek等，2010），而其他研究表明饲养密度在中间水平时腿病问题发生达到高峰而不是在较高的饲养密度下（Buijs等，2009; Hepworth et al., 2010），或者与鸡群密度一点也没关系（Dawkins等，2004）。

过长的光照时间也与弱腿的高发生率有关（Brickett等，2007; Bradshaw等，2002; Knowles等，2008; Petek等，2010），因为缺少锻炼（Cooper和Wrathall，2010；Sherlock等，2010），而这与黑暗时间（黑暗的长度）有关。许多与生长率的主要风险因素有关（Knowles等，2008；Bradshaw等，2002；Sherlock等，2010）。维持干燥垫料也对脚垫炎有主要影响（Sherlock等，2010）。改变这些因素可对肉鸡的腿健康有益。

更多最近的工作，包括本文报道的，已经证实孵化条件的变化与接下来腿强度之间的关系，这将在下面总结。

* "精细调整孵化条件可提供更多的管理机会以进一步抑制弱腿和瘸腿发生率"

与孵化条件的联系

最近发表的综述和研究已经指出孵化可能是导致肉仔鸡和火鸡骨骼不规则的不足之处。肉鸡中劈腿站立与孵化期间较高的湿度有关（Crespo & Shivaprasad, 2008）。Genin 等（2008）指出在孵化前八天循环过热可通过影响生长板缺氧而导致后期发生胫骨软骨发育不良。

Oviedo-Rondon等（2008）表示蛋在孵化之前的预热条件可影响孵化时孵出的鸡雏的骨特征以及扭曲腿的发生率直至40日龄。这些作者还描述了对骨发育的影响以及早期低温和/或后期高温模式的特征以及在孵化过程中部分时间采用低氧含量的作用。还可以看到对软组织的影响。在进一步试验中，Oviedo-Rondon等(2010)证实了早期低温和后期高温模式在生产较薄的腓肠肌腱纤维上的作用以及接下来生长中不同胶原结合模式的影响。在这些研究中所使用的温度都超出了正常孵化实践操作的温度范围（36°C and 39°C）。

局部的实际观察已经表明孵化差异对接下来腿强度的可能性影响，这将在下文进行探讨。

商业孵化所具有不同的孵化模式，这取决于他们的机器类型以及采取的是单阶段孵化还是多阶段孵化。多阶段孵化器采取的是单一的温度和湿度模式，温度通常为36.9-37.2℃，相对湿度为51%-65%。

单阶段商业孵化使用逐渐降低的温度模式，起始温度为38℃，到第18天时降低至37.2℃，相对湿度变化范围为50%-58%，有时可以扩大至30%-65%。

在这些研究中使用的试验模式是在商业所用模式的弹性范围内且在孵化后期基本都使用了较高的温度（0.5℃），7-18天时较低的相对湿度（3%）以及在第6天时温度降低1℃。

此研究的目标是测定是否所描述的孵化条件的变化导致了新孵化鸡雏早期骨骼脆弱的发生率增加，然后评估是否后期骨骼畸形或者弱腿与孵化模式有关。

材料和方法

试验1使用2000只受精蛋，试验2使用2560只受精蛋，这些种蛋都是来自快羽系育种公司。在每个试验中，将蛋随机分配到两个孵化器中。孵化器设定不同的操作直到孵化18天，如图1-4。主要预期差异是在孵化第6天时温度下降了大约1°C，在孵化7-18天一直持续为较高的温度（0.5°C）以及整个孵化过程中较低的相对湿度（3%）。这些设定是基于观察的实际情况，在此情况下能够产出具有较差骨骼质量的鸡雏，将理想的孵化模式设为对照组。从孵化第18天，所有蛋都转移到普通出雏器，温度设定为36.9°C，然后每天下降0.3°C直至21天。在每个孵化器内在蛋中放置温度和湿度记录仪（AZ8829），每小时记录一下数据。

在孵出时，从每个孵化器组随机采集44只鸡雏血样用于分析钙和磷水平，然后人道屠宰并收集两个股骨用于骨灰分分析。剩余的鸡雏分栏地板平养（试验1每栏240只，试验2每栏少45只）并饲喂新南威尔士恩菲尔德Millmaster Feeds饲料公司提供的育雏和育肥料（分别为0-21日龄和22-42日龄）。

在两周龄的时候，每组选40-44只鸡采集血样用于分析钙磷水平并人道屠宰。纵向截断选择左胫骨近端并在骨的中点用数字测径器测量骺生长板。收集左股骨用于骨灰分分析。

在试验1的第28天，随机抓取44只鸡并致死。纵向截断左胫骨近端并为TD损伤进行打分（0-4分，0分=没损伤而4=沿着整个生长板大范围损伤）。

在6周龄时，从每组随机选择40-50只鸡进行潜在期至死亡（LTL）测试（Weeks等，2002首次描述，Berg和Sanotra，2003进行了修改），最多5分钟。在试验1中，每栏30只的随机样本在14、21、28、35和42天称重。在试验2中，在7、21、28、35和42天以栏为基础称重。

数据正常分布时，使用方差分析（ANOVA）进行比较，其中独立的变量包括孵化器和性别，并在两个试验之间进行比较。在数据没有正常分布的情况下，使用Mann-Whitney U测试分离主要影响均值。使用Kaplan-Meier存活分析法比较LTL测试。

结果

每个机器数据记录仪记录的孵化温度和相对湿度相比想要的模式分别列出在图1至4中。在试验1中，对照组孵化器比预期操作略冷，相对湿度没有控制好。在试验2中，预期温度匹配较好但是湿度比预期低且两个孵化器差不多。

在孵出时，试验组孵化器的鸡雏股骨灰分百分比明显较低，血钙水平明显高于对照组（表1）。两个试验处理组的水分损失都明显较高（表1）。在试验1中，试验组相对湿度低3-4%，对照组和试验组的血清钙的水平都低于血清磷的水平（表1）。在2周龄时，所有四组的血清磷超过血清钙但是比例再次是试验1较高。在2周龄时，两个试验的骨灰分百分比具有明显的相互作用（表2），表明在不同的孵化条件下在此参数上的不同反应。

测试组孵出的鸡雏前两周的生长率明显较大

潜伏期至死亡的存活分析结果表明试验孵化组的鸡只具有明显较短的LTL（94秒，对照组为136.5秒，P=0.0002，Gehan's Wilcoxon测试）且有较少的鸡只在整个5分钟内保持站立。

讨论和结论

虽然不同，在两个孵化器中所使用的预期温度模式在能成功孵化的可接受限度范围内下降（37.1-38.2°C; Hill, 2010）。孵化器所使用的相对湿度比对照组更低。在前续工作中所使用的孵化器是半商业型，不是设计用于试验研究的能提供精确对照的机器。虽然孵化器没有完全按照预期执行，尤其对照组机器，每个孵化器模式的鸡雏之间的差异都在鸡孵出时以及2周龄时的骨灰分和血清钙上观察到，且这相对比较一致。在试验处理组中整个较高的孵化温度似乎增加了受精蛋的水分损失以及胚胎生长，对骨灰分和血清钙具有相对应的影响

早期快速生长也被认为有时会对鸡的弱腿有影响（Bradshaw等，2002；Brickett等，2007；Knowles等，2008）且当鸡只长大时，与试验孵化模式有关的早期生长速度的整体增长对LTL有影响。两个试验表明骨特征、血清钙水平、早期生长率和后期的弱腿可能受通常在可接受孵化范围内的孵化方案的影响。

致谢

本研究是受澳大利亚家禽合作研究中心的资助。
作者感谢Mrs Joy Gill、Mrs Melinda Hayter和Mr Todd Gill 在进行孵化、鸡只饲养和处理以及样本收集时给予的技术帮助。Mrs Gill 进行了骨灰分测量。Mrs Ball 和Mrs Sharpe 帮助进行了一些采样程序。

参考文献

Berg, C. and Sanotra, G.S. 2003. Animal Welfare, 12:655-659.
Bradshaw, R.H., Kirkden, R.D. and Broom, D.M. 2002. Avian and Poultry Biology Reviews, 13(2) May:45-103.
Brickett, K.E., Dahiya, J.P., Classen, H.L., Annett, C.B. and Gomis, S. 2007. Poultry Science 86:2117-2125.
Buijs, S., Keeling, L., Rettenbacher, S., Van Pouke, E. and Tuyttens, F.A.M. 2009. Poultry Science 88:1536-1543.
Buijs, S., Keeling, L.J, Vangestel, C., Baert, J., Vangetye, J., Andre, F. and Tuyttens, M. 2010. Applied Animal Behaviour Science, 124(3-4):97-103.
Butterworth, A., Reeves, N.A., Knowles, T.G. and Kestin, S.C. 2003. Animal Welfare. 12(4):661-667(7)
Cooper, M. and Wrathall, J. 2010. Animal Welfare 19(S):51-56.
Crespo, R. and Shivaprasad, H.L. 2008. In: Diseases of Poultry, 12th Ed. Saif, Y.M. Ed. Blackwell Publishing, Ames, Iowa. 1160-1162.
Dawkins, M.S. et al., 2004. Nature 427:342-344.
Elfick, D. 2010. Proceedings of the New Zealand Poultry Industry Conference 10:52-63.
Genin, O., Hasdai, A., Yalcin, S. and Pines, M. 2008. Proceedings of the World's Poultry Congress, Brisbane, Australia 258
Hardiman, J. 2010. Proceedings AVPA meeting, Christchurch, New Zealand. October 14-15.
Hepworth, 2010. Avian Pathology 39(5) Oct:405-409.
Hill, D. 2010. Proceedings AVPA Scientific meeting, Gold Coast, Queesland, Australia.
Kestin, S.C., Knowles, T.G., Tinch, A.E and Gregory, N.G. 1992. Vet Record, 131:190-194.
Knowles, T.G, Kestin, S.C., Haslam, S.M., Brown, S.N., Green, L.E., Butterworth, A., Pope, S.J., Pfeiffer, D and Nicol, C.J. 2008. PLoS ONE, 3(2):e1545. doi:10.1371/journal.pone.0001545
Oviedo-Rondon, E.O., Wineland, M.J., Christensen, V.L., Brake, J., Small, J. and Cutchin, H. 2008. Proceedings of the World's Poultry Congress, Brisbane, Australia 258.
Oviedo-Rondon, E.O., Halpar, J., Wineland, M.J., Ferket, P., Cummock, J. and Kusovschi, A. 2010. Proceedings AAAP meeting, Atlanta, August 1-4.
Petek, M., Cibik, R., Yildiz, H, Sonat, F. A., Gezen, S.S., Orman, A. and Aydin, C. 2010. Veterinarija Zootechnika (Vet Med Zoot) T. 51(73).
Sherlock, L., Demmers, T.G.M, Goodship, A.E., McCarthy, I.D. and Wathes, C.M. 2010. British Poultry Science 51(1):22-30.
Thorp, B.H. 2008. In: Poultry Diseases, 6th Ed. Elsevier. 470-482
Weeks, C.A., Knowles, T.G., Gordon, R.G., Kerr, A.E., Peyton, S.T. and Tilbrook, N.T. 2002. Vet Record, 151:762-764.

更多信息

-

阅读2011年澳大利亚家禽科学论文集列出的其他文章， 点击这里。

2011年8月

其它网站

© 5M有限企业
2000 - 2009
未经许可，
请勿复制本站内容
京ICP备07504732号

5M有限企业北京代表处，北京市朝阳区酒仙桥路14号兆维华灯大厦A3328房间，100016
电话 : +86(10)64354066 64354166 传真 : +86 (10) 64358466

本有限公司属Benchmark控股公司旗下